Кафедра патологической физиологии им. академика А.А. БогомольцаКафедра патологической анатомииВведение: В настоящее время перспективным методом лечения злокачественных опухолей является лазерная гипертермия с использованием наносенсибилизаторов.Цель работы: Выявить морфологические и метаболические изменения при воздействии лазерной гипертермии в сочетании с внутритуморальным введением золотых наностержней у животных с перевитой опухолью печени.Материалы и методы: На базе ЦКП НИИ фундаментальной и клинической уронефрологии Саратовского ГМУ им. В.И. Разумовского Минздрава РФ исследования  содержания молекул средней массы (МСМ) в сыворотке крови белых крыс спектрофотометрическим методом и морфологии альвеолярного рака печени РС-1 (банк опухолевых штаммов ГУ РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН). Гипертермия достигалась использованием инфракрасного лазера. Температуру нагрева опухоли контролирповали тепловизором IRYSYS 4010 (Англия). Наностержни синтезированы в ИБФРМ РАН г. Саратова.Результаты: После лазерной гипертермии без использования наночастиц очаги некроза в опухоли составили 5-10%. Одновременно отмечалось увеличение уровня МСМ в сыворотке крови животных  по сравнению с аналогичными показателями как группы интактных животных (р=0,001), так и группы животных с опухолью без проведения лазерной гипертермии (р=0,01). При сочетании лазерного излучения и золотых наностержней отмечали увеличение площади некротических изменений в опухолях до 80-90%. Однако уровень МСМ оставался стабильно высоким и не превышал показатели группы животных, подвергшихся лазерной гипертермии без использования золотых наностержней.Выводы: Использование золотых наностержней усиливает эффективность термического воздействия на клетки альвеолярного рака печени, но не усугубляет тяжесть аутоинтоксикации при проведении лазерной гипертермии.
Ивличев А.В., Наволокин Н.А., Емельяненко Т.В., Клюшник А.В., Новикова М.С. Научные руководители: зав. кафедрой патологической физиологии им. А.А.Богомольца, д.м.н., доцент Афанасьева Г.А. зав. кафедрой патологической анатомии, д.м.н., профессор Маслякова Г.Н. Структурные и метаболические изменения при лазерной гипертермии с использованием золотых наностержней // Бюллетень медицинских Интернет-конференций, Vol. 5, Issue 5, 2016, pp. 637-637

Экстракт аврана лекарственного (/Gratiolaofficinalis/ L.) обладает противоопухолевым, иммуностимулирующим и антиоксидантным действиями (/Полуконова и др., 2010; Полуконова, Наволокин и др., 2012, в печати/), в связи с чем, актуально определение степени его токсичности и анализ влияния экстракта  на ткани при местном введении.Цель работы определить токсичность водного раствора сухого экстракта аврана лекарственного и изменения в мышце у крыс, возникающие при его местном введении.Материалы и методы. Использованы24 лабораторные крысы, самцы весом 220±12,3 г, водный раствор сухого экстракта аврана, гистологические и статистические методы.Дизайн эксперимента: введены 4 группы по 6 животных, в 1-ой и 2-ой группах раствор экстракта вводился внутримышечно (в дозировке 1323 мг/кг), в 3-ей группе - внутрибрюшинно(1663 мг/кг),  4-ая группа служила контролем. В течение суток проводилась оценка состояния животныхпо 4-х балльной шкале по показателям: состояние шерсти, двигательная активность, болевая реакция, изменение мышечного тонуса, почесывания за 1 минуту, температура тела (/Хабриев Р.У., 2005/). Крысы2-ой группы выводились из эксперимента через сутки путем декапитации, для забора мышц и определения в них изменений после внутримышечного введения раствора экстракта аврана.Результаты. Через сутки ни одно животное не умерло, а состояние животных в целом по определяемым показателям улучшилось. В месте введения определялась жировая клетчатка и мышца с выраженной инфильтрацией сегментоядерными лейкоцитами, единичные участки некробиоза в мышце и жировой клетчатке. Все изменения обратимы и локальны. Использованные нами дозировки экстракта (1323 мг/кг и 1663 мг/кг), не вызвали гибели животных и согласно ГОСТу 12.1.007-76 и СанПиНу 2.1.4.1074-01, соответствуют значениям LD50 третьего класса опасности от 151 до 5000 мг/кг (малоопасные химические вещества).Выводы. Водный раствор экстракта аврана не обладает выраженной токсичностью, т.к. его LD50,по крайней мере, выше третьего класса токсичности (малоопасные химические вещества) и изменения, вызываемые при его введении в мышцах, обратимы и локальны.
Наволокин Н.А., Павлова А.В. Морфологические изменения в мышцах у лабораторных крыс и определение токсичности при введении экстракта аврана // Бюллетень медицинских Интернет-конференций, Vol. 2, Issue 2, 2012, pp. 82-82

Цель: изучение морфологических изменений в стенке мочевыводящих путей человека, развивающихся после контактного электроимпульсного воздействия (КЭИВ). Материал и методы. Использовали фрагменты хирургического материала, полученные после открытых операций на лоханке (n=25), мочеточнике (n=33) и мочевом пузыре (n=20). КЭИВ наносили одиночными (от 1 до 20) наносекундными импульсами мощностью 0,8 Дж и 1,0 Дж посредством зонда электроимпульсного литотриптера «Уролит-105М» на слизистую оболочку фрагментов, помещенных в чашки Петри с раствором 0,9% NaCI. Фрагменты фиксировали в формалине и, после обработки и заливки в парафин, готовили тканевые срезы. Результаты. Наиболее устойчивой к КЭИВ была стенка лоханки почки, в которой изменения в виде слущивания эпителия, дезорганизации базальной мембраны, паретического расширения капилляров и отека не выходили за пределы подслизистого слоя даже после воздействия 10 импульсами мощностью 1,0 Дж, нанесенными в одну и ту же точку. Во фрагментах мочеточника и мочевого пузыря аналогичные изменения выявляли после воздействия 5 импульсами мощностью 1,0 Дж, тогда как после нанесения 10 импульсов мощностью 1,0 Дж возникали изменения, отграниченные мышечным слоем. Заключение. КЭИВ на слизистую оболочку изолированных фрагментов мочевыводящих путей в виде 10 импульсов мощностью 1,0 Дж является безопасным, вызывает морфологические изменения, отграниченные мышечным слоем, и не приводит к перфорации стенки
Гудков А.В., Бощенко B.C., Недосеков В.В. Морфологические изменения в стенке мочевыводящих путей человека после контактного электроимпульсного воздействия: исследование in vitro // Саратовский научно-медицинский журнал, Vol. 7, Issue 4, 2011, pp. 937-941

Эффективные методы удаления твердых зубных тканей с помощью лазерного иттрий-алюминиевого граната (ИАГ) стали применяться сравнительно недавно с целью подготовки полости зуба и удаления кариеса. Однако ряд исследователей выявили морфологические изменения в твердых зубных тканях после лечения лазерным ИАГ. Целью настоящего научного исследования является сравнительный анализ лазерного лечения и инструментального традиционного лечения. В качестве материала для исследования были взяты 30 экстрактированных кариозных зубов пациентов, из них 10 подверглись лазерному лечению, остальные 20 - традиционному лечению с помощью стальной и алмазной пластинок. Лазерное лечение проводилось на основе неинвазивного распыления охлаждающего спрея на водяной основе с новым лазерным компонентом (ИАГ). Традиционное лечение осуществлялось с помощью низкоскоростного микродвигателя и воздушно-турбинной бормашины с охлаждением воды. Результаты каждого метода лечения оценивались ультразвуковым электронным микроскопом. Эффективность лечения лазерным ИАГ доказана при удалении кариозного дентина с минимальным термическим повреждением, окружающего интактного дентина и инфицированного и размягченного дентина в такой же степени, как и эффективность традиционного лечения. Низкая степень вибрации доказана как одно из преимуществ лазерного метода лечения. Данные, полученные при исследовании ультразвуковым электронным микроскопом, выявили микронеровности в дентине, подверженном лазерному излучению, и эмалированном покрытии зуба, требующем дальнейшего адгезивного восстановления. Результаты проведенного исследования подтверждают необходимость признания лазерного лечения ИАГ новейшим, модернизированным и эффективным методом лечения кариозных зубов
Томов Георгий Оценка морфологических изменений твердых зубных тканей, обработанных лазером и ротационными инструментами с помощью ультразвукового электронного микроскопа // Саратовский научно-медицинский журнал, Vol. 6, Issue 3, 2010, pp. 667-671